线粒体复合体Ⅱ试剂盒说明书
线粒体呼吸链/线粒体含量/线粒体活性/检测线粒体活性试剂盒
联系人：陈天添 销售热线：13439225985
分光光度法 25 管/24 样
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义
线粒体复合体Ⅱ又称琥珀酸-辅酶Q 还原酶，广泛存在于动物、植物、微生物和培养
细胞的线粒体中，催化琥珀酸氧化生成延胡索酸，同时辅基FAD 还原为FADH2，后者进一
步还原氧化型辅酶Q 生成还原型辅酶Q，是呼吸电子传递链的支路。
测定原理
复合体Ⅱ的催化产物还原型辅酶Q 可进一步还原2,6-二氯吲哚酚，2,6-二氯吲哚酚在
605nm 有特征吸收峰，通过检测2,6-二氯吲哚酚的减少速率来计算该酶活性。
需自备的仪器和用品
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰
和蒸馏水。
试剂组成和配制
试剂一：25mL×1 瓶，-20℃保存；
试剂二：5mL×1 瓶，-20℃保存；
试剂三：0.5 mL×1 支，-20℃保存；
试剂四：液体25mL×1 瓶，4℃保存；
试剂五：粉剂×1 支，-20℃保存；
试剂六：粉剂×1 支，-20℃保存；
试剂七：液体2.5mL×1 瓶，4℃保存；
样本的前处理：
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离：
1、 准确称取0.1g 组织或收集500 万细菌或细胞，加入1mL 试剂一和10uL 试剂三，用冰
浴匀浆器或研钵匀浆。
2、 将匀浆600g，4℃离心5min。
3、 弃沉淀，将上清液移至另一离心管中，11000g，4℃离心10min。
4、 上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白，可用于测定从线粒体泄漏的复合体Ⅱ（此步可选
做）。
5、 步骤④中的沉淀即为线粒体，加入200uL 试剂二和2uL 试剂三，超声波破碎（冰浴，
功率20％或200W，超声3s，间隔10 秒，重复30 次），用于复合体Ⅱ酶活性测定。
测定步骤：
1、 分光光度计预热30min 以上，调节波长至605nm，蒸馏水调零。
2、 样本测定
（1）工作液的配制：临用前把试剂五和试剂六转移到试剂四中混合溶解，置于37℃（哺乳
动物）或25℃（其它物种）孵育5min；用不完的试剂4℃可保存一周；
（2）在1mL 玻璃比色皿中加入40μL 样本、100μL 试剂七和800μL 工作液，立即混匀，
记录605nm 处初始吸光值A1 和 2min 后的吸光值A2，计算ΔA=A1-A2。
复合体Ⅱ活力单位的计算
（1） 按样本蛋白浓度计算
单位的定义：每mg 组织蛋白每分钟消耗1 nmol 2,6-二氯吲哚酚定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅱ活力(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(V 样×Cpr) ÷T=559×ΔA÷Cpr
此法需要自行测定样本蛋白质浓度。
（2） 按样本鲜重计算
单位的定义：每g 组织每分钟消耗1 nmol 2,6-二氯吲哚酚定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅱ 活力(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷ （ ε×d ） ×109]÷(W× V 样÷V 样总)
÷T=113×ΔA÷W
（3） 按细菌或细胞密度计算
单位的定义：每1 万个细菌或细胞每分钟消耗1 nmol 2,6-二氯吲哚酚定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅱ活力(nmol/min/104 cell)=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(500×V 样÷V 样总) ÷T
=0.226×ΔA
V 反总：反应体系总体积，9.4×10-4 L；ε：2,6-二氯吲哚酚摩尔消光系数，2.1×104 L / mol /cm；
d：比色皿光径，1cm；V 样：加入样本体积，0.04 mL；V 样总：加入提取液体积，0.202 mL；
T：反应时间，2 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g；500：细胞或细
菌总数，500 万。 
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